CHAPITRE III: ANALYSE ET INTERPRETATION DES RESULTATS

1. RESULTATS
2. Pour le test d’identification, les résultats se présentent comme suit:

La solution de PVP-I₂ préparée pour le test d’identification a une coloration jaune paille et avec un pH de 3,7.

• Pour le 1^er test d’identification, le résultat est : Apparition de la coloration bleu foncée de la solution.

• Pour le 2^ème test d’identification, le résultat est : Aucune couleur bleu foncée ne s’affiche dans les 60sécondes.

2. Pour le dosage colorimétrique de la solution de PVP-I2, les résultats sont présentés comme suit:

Lors du dosage, on observe le changement de la coloration de la solution de PVP-I₂ : du rouge brun au jaune paille à l’équivalence. Après l’équivalence la solution incolore. Avant l’équivalence la coloration persistante de la solution (rouge brun). A l’ajout de l’empois d’amidon à l’équivalence, on observe une coloration bleu foncée.

 8 essais ont été faits ; d’où les résultats suivants :

Tableau N° 1 : Le volume a l’équivalence et le pourcentage en i₂ pour l’essai avec deux solutions de PVP-I₂  (diluée et concentrée)

	Essais	Volume à l’équivalence	Moyenne	Pourcentages
Essai avec la solution de PVP-I2 diluée	1er essai	Ve = 7,8ml	7,575 ml	9,62%
	2ème essai	Ve = 7,9ml
	3ème essai	Ve = 7,4ml
	4ème essai	Ve = 7,2ml
Essai avec la solution de PVP-I2 concentrée	1er essai	Ve = 7,1ml	7,25 ml	9,21%
	2ème essai	Ve = 7,6ml
	3ème essai	Ve = 7,0ml
	4ème essai	Ve = 7,3ml

Le volume a l’équivalence 7,575 ml et 7,25 ml représente la quantité de Na₂S₂O_3. 5H₂O qui a réagi avec le I_2. Le 9,62 % et 9,21% représente la quantité de l’I₂ en pourcentage dans la solution de PVP-I₂

 

3. Pour le test du pH, les résultats sont les suivants :

Tableau N° 2 : Les valeurs du pH déterminées selon trois jours différents

Vendredi 25/ 08 / 2017	Au 1er tour	1,7
Jeudi 31/ 08/ 2017	Au 2ème tour	1,8
Vendredi 01 / 09 / 2017	Au 3ème tour	1,8

 Les pH trouvés sont proche de 1.8

1. Pour le test Microbiologique, les résultats sont les suivants :
2. Culture en milieu liquide :

On constate que les tubes présentent une turbidité (trouble).

1. Culture sur milieu solide:

• Avec le 1^er échantillon

Légende :

+ : Soit Présence de colonies ou soit décoloration du milieu de culture.

- : Absence de colonies                             

• Avec le 2^ème échantillon

Légende :

+ : Présence de colonies.

1. Antibiogramme :

Légende :

+ : On constate les diamètres de la zone inhibition dans les boites de pétris contenant les disques.

Tableau N° 3 : Diamètres de la zone d’inhibition

Boites de pétris	Disques	Diamètre de la Zone d’inhibition
Boite 1	Disque 1	10 mm
	Disque 2	42 mm
	Disque 3	8 mm
	Disque 4	8 mm
	Disque 5	9 mm
	Disque 6	10 mm
Boite 2	Disque 1	7 mm
	Disque 2	11 mm
	Disque 3	10 mm
	Disque 4	9 mm
Boite 3	Disque 1	8 mm
	Disque 2	27 mm
	Disque 3	10 mm
	Disque 4	10 mm

Au vue de ce tableau, on constate que le disque 2 de la boite 1 présente un grand diamètre de la zone d’inhibition.

1. INTERPRETATIONS
2. Pour le test d’identification:

• Pour le 1^er test d’identification, il y a eu apparition de la couleur bleue foncée qui justifie la présence de I₂ (la réaction est rapide).
• Pour le 2^ème test d’identification ; Aucune couleur ne s’affiche dans les 60sécondes, ce qui justifie la présence de I₂ (la réaction est lente).
• pH de la solution de PVP-I₂ préparée pour le test d’indentification est de 3, 7

Comme l’indique l’US.Pharmacopeia (USP 29- NF 24, Page 1779), le pH de la solution préparée pour le test d’identification, ne doit pas être plus de 6 et pour le 1er test d’identification une coloration bleu foncée doit apparaitre ainsi que pour le 2eme test  d’identification aucune coloration bleu foncée ne doit s’afficher dans les 60 secondes

Nous  pouvons dire que la solution préparée au laboratoire a pu  respecter  la norme qu’exige l’U.S. Phamacopeia pour le test d’identification.

2. Pour le dosage colorimétrique :

1°. Le réactif limitant avant l’équivalence (qui disparait le premier) est le S₂O₃^2- (aq) et le réactif limitant après l’équivalence est le I₂.

 2°. Justification de la couleur du mélange réactionnel à l’équivalence :

- Avant l’équivalence, la coloration persistante due à la présence de I₂

- Après l’équivalence, solution incolore due à l’absence de I₂.

3°. L’empois d’amidon ou le thiodène ajouté à l’équivalence est l’indicateur de fin de réaction parce qu’il permet de repérer le moment où tout le I₂ a été totalement consommé en réagissant avec les ions thiosulfates versés. L’empois d’amidon prend une coloration bleue foncée en présence de I₂. On en met quelques gouttes dans la solution de PVP-I₂ à doser (il est ajouté quand la solution devient jaune paille : à l’équivalence). Tant qu’il y a présence de I₂, la solution est bleue foncée. Dès qu’I₂ a totalement disparu (transformé en iodure I-incolore), l’empois d’amidon se décolore. Le virage se fait du bleu foncé à l’incolore.

4°. L’équivalence de la réaction est atteinte lorsque les réactifs ont été introduits dans les proportions stœchiométriques. La relation à l’équivalence indique dans quelle proportion les quantités de matière des réactifs ont été introduits.

Comme l’indique la pharmacopée Européenne (4ème édition), la Povidone iodée doit contenir pas moins de 9% et pas plus de 12% de la quantité d’iode.

En se référant à ce qu’indique la pharmacopée Européenne, la Povidone iodée 10%  préparée au laboratoire contient 9, 62%, et 9, 21% de la quantité d’iode. Cela veut dire que la Povidone iodée préparée au laboratoire a pu respecter la norme exigée par la pharmacopée  Européenne : 9% - 12%.

3. Pour le test du pH:

D’après la pharmacopée Européenne (4ème édition) le pH de la Povidone iodée  est de 1, 5 à 5, 0

En se référant à ce qu’indique la pharmacopée Européenne, nous pouvons dire que la Povidone iodée préparée au laboratoire se retrouve dans la norme du pH exigée par la pharmacopée Européenne (Soit le pH de la Povidone iodée 1, 7 ; 1, 8 ; 1, 8) 

4. Pour le test Microbiologique :

• Pour la culture en milieu liquide, la turbidité justifie la présence des bactéries.
• Pour la culture sur le milieu solide ; l’apparition des colonies prouve qu’il y a des bactéries, la décoloration du milieu de culture est aussi due aux bactéries.
• L’absence des colonies ou de la décoloration du milieu de culture prouve toute absence des bactéries.
• l’Antibiogramme : c’est un test de la détermination de la sensibilité d’une bactérie aux antibiotiques. Concernant  les résultats, la zone claire représente la zone d’inhibition sur laquelle on doit directement mesurer la valeur du diamètre.

Le plus grand diamètre de la zone d’inhibition est 42mm et le plus petit diamètre de la zone d’inhibition est 7mm .Les colonies trouvées ainsi que la décoloration du milieu de culture sont non loin des résultats écrits par Paul BRUOEN, Syllabus de Microbiologie, 2016-2017